中文名稱：人外周血淋巴細胞分離液(FICOLL配制)
中文別名：人外周血淋巴細胞分離液(FICOLL配制)
中文別名：人外周血淋巴細胞分離液(FICOLL配制)
人外周血淋巴細胞分離液說明書
本品用于分離人外周血淋巴細胞（FICOLL配制）
【包裝規(guī)格】
200ml/瓶
【貨號】
LTS1077-1
【適用儀器】
最大離心力可達 1200g 的水平轉(zhuǎn)子離心機
【檢驗方法】
全過程樣本、試劑及實驗環(huán)境均需在 20±2℃的條件下進行。
通用實驗方法
以 0.5ml 后續(xù)實驗所需相應(yīng)液體重懸目的細胞。
注：血液樣品量增大時，可通過改變離心管直徑的方法始終保持樣本量高度與分離液高度為
2.4cm 與 3cm，其他分離條件不變。
為滿足客戶實際使用需求，根據(jù)不同血液樣本量推薦具體實驗操作方法如下：
一、 使用 15ml 離心管時：
情況 A：血液樣本量小于 3ml 時，實驗方法如下：
細胞層。第三層為透明分離液層。第四層為紅細胞層。
情況 B：血液樣本量為 3-6ml 時，實驗方法如下：
二、 使用 50ml 離心管時：
情況 A：血液樣本量為 6-10ml 時，實驗方法如下：
本品用于分離人外周血淋巴細胞（FICOLL配制）
【包裝規(guī)格】
200ml/瓶
【貨號】
LTS1077-1
【適用儀器】
最大離心力可達 1200g 的水平轉(zhuǎn)子離心機
【檢驗方法】
全過程樣本、試劑及實驗環(huán)境均需在 20±2℃的條件下進行。
通用實驗方法
- 取 2ml 新鮮抗凝血與 2ml 樣本稀釋液（產(chǎn)品編號：2010C1119）混勻。
- 取一支 15ml 離心管，加入 3ml 分離液，用吸管小心吸取稀釋后的血液樣本加于分離液之液面上，400g，30-40min。
- 離心后，此時離心管中由上至下分為四層。第一層為血漿層。第二層為環(huán)狀乳白色淋巴細胞層。第三層為透明分離液層。第四層為紅細胞層。
- 取白環(huán)層，加入 3 倍體積的清洗液（產(chǎn)品編號：2010X1118）混勻，60-100g，離心 10min，棄上清。
- 加 6-8ml 清洗液（產(chǎn)品編號：2010X1118）混勻，60-100g，離心 10min，棄去上清，后
以 0.5ml 后續(xù)實驗所需相應(yīng)液體重懸目的細胞。
注：血液樣品量增大時，可通過改變離心管直徑的方法始終保持樣本量高度與分離液高度為
2.4cm 與 3cm，其他分離條件不變。
為滿足客戶實際使用需求，根據(jù)不同血液樣本量推薦具體實驗操作方法如下：
一、 使用 15ml 離心管時：
情況 A：血液樣本量小于 3ml 時，實驗方法如下：
- 取一支 15ml 離心管，加入 3ml 分離液。
- 用吸管小心吸取血液樣本加于分離液之液面上，400-650g，離心 20-30min（注：根據(jù)血液樣本量確定離心條件，血液樣本量越多，離心力越大，離心時間越長，具體離心條件需客戶自行摸索，以達到最佳分離效果）。
- 離心后，此時離心管中由上至下分為四層。第一層為血漿層。第二層為環(huán)狀乳白色淋巴
細胞層。第三層為透明分離液層。第四層為紅細胞層。
- 用吸管小心吸取第二層環(huán)狀乳白色淋巴細胞層到另一 15ml 離心管中，向所得離心管中加入 10ml 清洗液（產(chǎn)品編號：2010X1118），混勻細胞。
- 250g，離心 10min。
- 棄上清。
- 用吸管以 5ml 清洗液（產(chǎn)品編號：2010X1118）重懸所得細胞。
- 250g，離心 10min。
- 重復(fù) 6、7、8，棄上清后以 0.5ml 后續(xù)實驗所需相應(yīng)液體重懸細胞。
情況 B：血液樣本量為 3-6ml 時，實驗方法如下：
- 取一支 15ml 離心管，先加入與血液樣本等量的分離液。
- 用吸管小心吸取血液樣本加于分離液之液面上，450-650g，離心 20-30min（注：根據(jù)血液樣本量確定離心條件，血液樣本量越多，離心力越大，離心時間越長，具體離心條件需客戶自行摸索，以達到最佳分離效果，但最大離心力最好不超過 1200g）。
- 離心后，此時離心管中由上至下分為四層。第一層為血漿層。第二層為環(huán)狀乳白色淋巴細胞層。第三層為透明分離液層。第四層為紅細胞層。
- 用吸管小心吸取第二層環(huán)狀乳白色淋巴細胞層到另一 15ml 離心管中，向所得離心管中加入 10ml 清洗液（產(chǎn)品編號：2010X1118），混勻細胞。
- 250g，離心 10min。
- 棄上清。
- 用吸管以 5ml 清洗液（產(chǎn)品編號：2010X1118）重懸所得細胞。
- 250g，離心 10min。
- 重復(fù) 6、7、8，棄上清后以 0.5ml 后續(xù)實驗所需相應(yīng)液體重懸細胞。
二、 使用 50ml 離心管時：
情況 A：血液樣本量為 6-10ml 時，實驗方法如下：
- 取一支 50ml 離心管，先加入與血液樣本等量的分離液。
- 用吸管小心吸取血液樣本加于分離液之液面上，500-950g，離心 20-30min（注：根據(jù)血液樣本量確定離心條件，血液樣本量越多，離心力越大，離心時間越長，具體離心條件需客戶自行摸索，以達到最佳分離效果，但最大離心力最好不超過 1200g）。
- 離心后，此時離心管中由上至下分為四層。第一層為血漿層。第二層為環(huán)狀乳白色淋巴
細胞層。第三層為透明分離液層。第四層為紅細胞層。
- 用吸管小心吸取第二層環(huán)狀乳白色淋巴細胞層到另一 15ml 離心管中，向所得離心管中加入 10ml 清洗液（產(chǎn)品編號：2010X1118），混勻細胞。
- 250g，離心 10min。
- 棄上清。
- 用吸管以 5ml 清洗液（產(chǎn)品編號：2010X1118）重懸所得細胞。
- 250g，離心 10min。
- 重復(fù) 6、7、8，棄上清后以 0.5ml 后續(xù)實驗所需相應(yīng)液體重懸細胞。
情況 B：血液樣本量為 10-20ml 時，實驗方法如下：
- 取一支 50ml 離心管，先加入與血液樣本等量的分離液。
- 用吸管小心吸取血液樣本加于分離液之液面上，500-1100g，離心 20-30min（注：根據(jù)血液樣本量確定離心條件，血液樣本量越多，離心力越大，離心時間越長，具體離心條件需客戶自行摸索，以達到最佳分離效果，但最大離心力最好不超過 1200g）。
- 離心后，此時離心管中由上至下分為四層。第一層為血漿層。第二層為環(huán)狀乳白色淋巴細胞層。第三層為透明分離液層。第四層為紅細胞層。
- 用吸管小心吸取第二層環(huán)狀乳白色淋巴細胞層到另一 15ml 離心管中，向所得離心管中加入 10ml 清洗液（產(chǎn)品編號：2010X1118），混勻細胞。
- 250g，離心 10min。
- 棄上清。
- 用吸管以 5ml 清洗液（產(chǎn)品編號：2010X1118）重懸所得細胞。
- 250g，離心 10min。
- 重復(fù) 6、7、8，棄上清后以 0.5ml 后續(xù)實驗所需相應(yīng)液體重懸細胞。
【注意事項】
- 全過程樣本、試劑及實驗環(huán)境均需在 20±2℃的條件下進行。為獲得最佳的實驗結(jié)果，最好在取血 2h 內(nèi)進行實驗，血液存放時間越長，細胞分離效果越差。血液放置超過 6h 后分離效果更差甚至不能達到分離目的。
- 本實驗最好不要使用高聚合材質(zhì)（如聚苯乙烯）的塑料制品，應(yīng)使用無靜電、低靜電離心管及未經(jīng)堿處理過后的玻璃制品，因為靜電作用將導(dǎo)致細胞貼壁、堿處理的玻璃表面會變成毛面，影響細胞分離效果。
- 吸取過多的淋巴細胞層及分離液層會導(dǎo)致分離液交界處的粒細胞被吸出從而使混雜的粒細胞數(shù)量增加。
- 吸取過多的淋巴細胞層上層溶液會導(dǎo)致血漿蛋白及血小板混雜。
- 如所實驗后細胞得率或活性過低，請聯(lián)系上海研謹生物技術(shù)人員以尋求幫助。
- 當(dāng)血液樣本粘度過高需稀釋時，最優(yōu)稀釋方法：將血液與樣本稀釋液（產(chǎn)品編號：2010C1119）1:1 稀釋混勻備用。注：不當(dāng)?shù)南♂尫椒〞档图毎寐始盎钚浴Ｈ缪簶颖窘?jīng)過稀釋則分離過程中需適當(dāng)降低離心力和離心時間。
- 因血液樣本的個體差異及血液粘度不同，需調(diào)整離心力及離心時間，離心力最大不超過
1000g。
【儲存條件及有效期】
常溫保存，有效期 2 年。本品易感染細菌，需無菌條件操作。無菌條件下操作，啟
封后置常溫保存。如 4℃保存，本分離液易出現(xiàn)白色結(jié)晶，影響分離效果。
【參考值（參考范圍）】
本實驗淋巴細胞提取率及純度均大于 80%。
下表為成年人外周血中各種細胞的數(shù)量及比例，用戶可適當(dāng)進行參考。
| 紅細胞 | 白細胞 | 血小板 | |||||||||||||
| （4.0-10.0）×109 | |||||||||||||||
| （4.0-5.5）×1012 | （1.0-3.0）×1011 | ||||||||||||||
| 含量（個/L） | 中性粒細胞 | 淋巴細胞 | 單核細胞 | ||||||||||||
| 50%-70% | 20%-40% | 3%-8% | |||||||||||||
| 【新型離心管最佳實驗技術(shù)方案】 | |||||||||||||||
| 抗凝血液 | 稀釋液 | 分離液 | 離心力 | 離心時間 | |||||||||||
| 15mL 離心管 | 3mL | 3mL | 約 4mL | ||||||||||||
| （與隔片持平） | 400-500g | ||||||||||||||
| 4mL | / | ||||||||||||||
| （最大不超過 | 20-30min | ||||||||||||||
| 10mL | 10mL | 約 15mL | |||||||||||||
| 50mL 離心管 | 1000g） | ||||||||||||||
| 15mL | / | （與隔片持平） | |||||||||||||
【相關(guān)實驗技術(shù)方案】
- 所獲得淋巴細胞的培養(yǎng)技術(shù)。
- 所獲得淋巴細胞的核酸提取技術(shù)。
- 所獲得淋巴細胞的鑒定方法A.流式細胞技術(shù)B.免疫組化技術(shù)C.原位雜交技術(shù)
D.PCR 技術(shù)
【可能存在的問題及解決方法】
1. 由于血液粘度、細胞密度等差異可能造成的問題及解決方案如下表所示：
| 出現(xiàn)情況 | 出現(xiàn)原因 | 建議解決方案 |
| 離心后目的細胞存在于血漿層或稀釋液層 | 轉(zhuǎn)速過小或離心時間過短 | 適當(dāng)增減轉(zhuǎn)速 |
| 離心后目的細胞存在于分離液中 | 轉(zhuǎn)速過大或離心時間過長 | |
| 離心后白環(huán)層彌散 | 細胞密度過大 | 調(diào)整細胞密度 |
| 離心后白環(huán)層太淺或看不見 | 細胞密度過小 | |
- 本分離液分離細胞的原理為密度梯度離心，其密度與溫度、大氣壓等密切相關(guān)。不同地區(qū)客戶可根據(jù)當(dāng)?shù)厍闆r對離心條件進行適當(dāng)調(diào)整。建議對離心條件進行調(diào)整時，恒定離心時間，對離心轉(zhuǎn)速進行調(diào)整。
- 本分離液依照國際標準，全部使用藥用級原料，性能指標與國產(chǎn)同類產(chǎn)品略有不同，可
能出現(xiàn)紅細胞沉降不完全的情況，可以適當(dāng)加大離心轉(zhuǎn)速。
注：在對離心條件進行調(diào)整時，離心轉(zhuǎn)速的加減以 50-100g 為基數(shù)，直至達到最佳分離效果，離心力最小不得小于 400g，最大不得大于 1200g。離心時間以 20-30min 為準。
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