中文名稱：駱駝骨髓單核細胞分離液試劑盒
中文別名：駱駝骨髓單核細胞分離液試劑盒
產品類別：骨髓單核細胞的分離中文別名：駱駝骨髓單核細胞分離液試劑盒
產品編號：TBD2011DCM
產品名稱：駱駝骨髓單核細胞分離液試劑盒
產品規格：2X200ml/Kit
產品價格：￥1000.00元
本品用于分離駱駝骨髓單核細胞
“XXXX”動物骨髓單核細胞分離液實驗方法
技術文檔編號：TBD0028SOP
【產品規格】
2×200ml/Kit
【產品組成】
為方便廣大用戶使用，試劑內容如下：
| 名稱 | 產品編號 | 規格 | |
| A | 分離液 1 | 200ml | |
| B | 分離液 2 | 200ml | |
| C | 樣本稀釋液（贈品） | 2010C1119 | 200ml |
| D | 清洗液（贈品） | 2010X1118 | 200ml |
| E | F 液（贈品） | F2013TBD | 200ml |
| Ｆ | 說明書 | 1 份 | |
【實驗前準備】
適用儀器：最大離心力可達 1200g 的水平轉子離心機
【檢驗方法】
全過程樣本、試劑及實驗環境均需在 20±2℃的條件下進行。
- 首先制備骨髓單細胞懸液，制備方法詳見“骨髓沖洗單細胞懸液制備技術（文檔編號：
TBD0004SOP）”。
- 取一支離心管，依次小心加入分離液 1、分離液 2（體積比為 3:1，試劑總量與細胞懸液體積比為 2：1。如細胞懸液為 2ml，則先后加入分離液 1：3ml、分離液 2：1ml。試劑總量最少不低于 4ml。），制成梯度界面，各液面分層一定要清晰。
- 用吸管小心吸取細胞懸液加于分離液液面上，400-500g，離心 20-30min（注：根據血液樣本量確定離心條件，血液樣本量越多，離心力越大，離心時間越長，具體離心條件需客戶自行摸索，以達到最佳分離效果）。
- 離心后，此時離心管中由上至下分為六層。第一層為稀釋液層。第二層為環狀乳白色單核細胞層（第一層白環及上層 50%分離液 2）。第三層為環狀乳白色單個核細胞層（下層50%分離液 2 及第二層白環）。第四層為透明分離液 1 液層。第五層為粒細胞層。第六層為紅細胞層。
- 用吸管小心吸取第二層到另一 15ml 離心管中，往所得離心管中加入 10ml 清洗液（產品編號：2010X1118），混勻細胞。
- 250g，離心 10min。
- 棄上清。
- 用吸管以 5-10ml 清洗液（產品編號：2010X1118）重懸所得細胞。
- 250g，離心 10min。
- 重復 7、8、9，棄上清后以 0.5ml 后續實驗所需相應液體重懸細胞。
分離圖例
【差異貼壁法純化細胞】
（1）用單核細胞無血清培養基（產品編號：CTBD2011）或單核細胞完全培養基（產品
編號：HCTBD2011）以 1.5-3×106 個/ml 的密度重懸細胞，將細胞鋪于一次性細胞板或
細胞瓶中，放于 37℃二氧化碳培養箱中進行貼壁培養。
（2）2-4 小時內貼壁的為巨噬細胞前體（俗稱為單核細胞）。
（3）10-24 小時內貼壁的單個核細胞為內皮、內皮祖細胞、干細胞。
（4）不貼壁的為淋巴細胞。
注：
- 無血清培養基中不含任何動物成分，為得到更佳培養效果可添加 10%自體血漿或2-8%經灝洋篩選的胎牛血清。
- 完全培養基中含 2-20%胎牛血清（血清具體含量由所培養的目的細胞而定）。
- 由于每種細胞的貼壁時間存在差異可將所得細胞分開已達簡單的純化目的，此法成
性分選。
【注意事項】
- 全過程樣本、試劑及實驗環境均需在 20±2℃的條件下進行。為獲得最佳的實驗結果，最好在取樣 2h 內進行實驗，樣本存放時間越長，細胞分離效果越差。樣本放置超過 6h 后分離效果更差甚至不能達到分離目的。
- 本實驗最好不使用高聚合材質（如聚苯乙烯）的塑料制品，應使用無靜電、低靜電離心管及未經堿處理過后的玻璃制品，因為靜電作用將導致細胞貼壁、堿處理的玻璃表面會變成毛面，影響細胞分離效果。
- 分離液用量大于骨髓單細胞懸液樣本量時，分離效果更佳。
- 如實驗后細胞得率或活性過低，請聯系技術以尋求支持幫助.
【儲存條件及有效期】
常溫保存，有效期 2 年。本品易感染細菌，需無菌條件操作。無菌條件下操作，啟
封后置常溫保存。如 4℃保存，本分離液易出現白色結晶，影響分離效果。
【參考值（參考范圍）】
本實驗單核細胞提取率大于 80%。
下表為成年人外周血中各種細胞的數量及比例，用戶可適當進行參考。
| 紅細胞 | 白細胞 | 血小板 | |||||
| （4.0-10.0）×109 | |||||||
| 含量（個/L） | （4.0-5.5）×1012 | 中性粒細胞 | 淋巴細胞 | 單核細胞 | （1.0-3.0）×1011 | ||
| 50%-70% | 20%-40% | 3%-8% | |||||
| 【相關實驗技術方案】 | |||||||
| 1. | 骨髓沖洗單細胞懸液制備技術。 | ||||||
| 2. | 所獲得單核細胞的培養技術。 | ||||||
| 3. | 所獲得單核細胞的核酸提取技術。 | ||||||
| 4. | 所獲得單核細胞的鑒定方法 | ||||||
| A.流式細胞技術 | |||||||
| B.免疫組化技術 | |||||||
| C.原位雜交技術 | |||||||
D.PCR 技術
【可能存在的問題及解決方法】
1. 由于血液粘度、細胞密度等差異可能造成的問題及解決方案如下表所示：
| 出現情況 | 出現原因 | 建議解決方案 |
| 離心后目的細胞存在于血漿層或稀釋液層 | 轉速過小或離心時間過短 | 適當增減轉速 |
| 離心后目的細胞存在于分離液中 | 轉速過大或離心時間過長 | |
| 離心后白環層彌散 | 細胞密度過大 | 調整細胞密度 |
| 離心后白環層太淺或看不見 | 細胞密度過小 | |
- 本分離液分離細胞的原理為密度梯度離心，其密度與溫度、大氣壓等密切相關。不同地區客戶可根據當地情況對離心條件進行適當調整。建議對離心條件進行調整時，恒定離心時間，對離心轉速進行調整。
- 本分離液依照國際標準，全部使用藥用級原料，性能指標與國產同類產品略有不同，可能出現紅細胞沉降不完全的情況，可以適當加大離心轉速。
注：在對離心條件進行調整時，離心轉速的加減以 50-100g 為基數，直至達到最佳分離效果，
離心力最小不得小于 400g，最大不得大于 1200g。離心時間以 20-30min 為準。
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